研究论文
大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种及其杂交子代的遗传分析
蔡磊1 2, 白俊杰12, 李胜杰1, 陈昆慈1, 樊佳佳1, 马冬梅1
1. 中国水产科学研究院 珠江水产研究所, 农业部热带亚热带水产资源利用与养殖重点实验室, 广东 广州 510380;
2. 上海海洋大学 水产与生命学院, 上海 201306
摘要: 用18对微卫星引物对大口黑鲈北方亚种(Micropterus salmoides salmoides, N)、佛罗里达亚种(M. salmoides floridanus, F)及其正交子代(N♀×F♂)和反交子代( F♀×N♂)进行遗传多样性和遗传结构分析。结果表明, 18对引物扩增出的等位基因数为2~8个, 平均等位基因数为5.0。检测到6对(Jzl48、Jzl68、Jzl84、MiSaTPW76、Msal21、Mdo6 和Mdo7)亚种间特异性引物, 其中有2对引物(Jzl48和Mdo7)可以用来鉴别大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种和其杂交子代。平均有效等位基因数、平均期望杂合度和平均多态信息含量均为杂交组合F♀×N♂最高, 分别为3.199 7, 0.638 9和0.570 6, 平均观测杂合度为杂交组合N♀×F♂最高(0.848 8)。对亲代与杂交子代间的遗传分化分析表明, 正反交子代均与北方亚种的遗传分化最小(0.092和0.119 6)。基于Nei’s遗传距离构建的UPGMA系统进化树显示正交子代N♀×F♂与母本N聚为一支, 反交子代F♀×N♂与父本N聚为一支。 关键词: 大口黑鲈北方亚种; 佛罗里达亚种; 杂交; 微卫星标记; 遗传关系
中图分类号: S917 文献标志码: A 文章编号: 10058737(2012)01007007
大口黑鲈(Micropterus salmoides)原产于北美洲, 是一种世界性的游钓鱼类, 20世纪70年代末中国从国外引进大口黑鲈, 并于1983年人工繁殖获得成功, 同年大口黑鲈引入广东省, 现已推广到全国各地, 成为国内重要的淡水养殖品种之一[1]。根据原产地的地理分布和形态学方面的不同, 大口黑鲈被分为2个亚种: 一种是分布在美国中东部、墨西哥东北部和加拿大东南部的大口黑鲈北方亚种(M. salmoides salmoides)[2]; 另一种是分布在佛罗里达州南部的大口黑鲈佛罗里达亚种(M. salmoides floridanus) [3]。樊佳佳等[4]利用形态学和特异性的微卫星标记对国内养殖大口黑鲈的亚种分类地位进行鉴定, 认为其属于北方亚种。大口黑鲈两亚种的自然种群易发生杂交, 对杂交子代与亲本佛罗里达亚种和北方亚种在生长性能方
面的研究结论却存在分歧: Williamson等[5]在美国南部德克萨斯州对大口黑鲈进行亚种间杂交和生长性能测定, 结果显示杂交种的生长性能不如大口黑鲈北方亚种, 而Kleinsasser等[6]在美国南部德克萨斯州进行类似的杂交性能测定, 结果认为佛罗里达亚种♀×北方亚种♂的杂交子代最具生长优势。目前国内还未见大口黑鲈亚种之间杂交研究的报道。
本研究选用微卫星标记对大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其正反交子代的遗传结构进行分析, 以期为大口黑鲈的杂交育种提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 实验材料
实验用大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种亲鱼均取自中国水产科学研究院珠江水产研究所良
收稿日期: 20110406; 修订日期: 20110708.
基金项目: 农业部94目(2010Z9); 农业部公益性行业科研专项(200903045); 国家科技支撑计划项目(2006BAD01A1209);
广东省科技计划项目(2007B020708008).
作者简介: 蔡磊(1986−), 男, 硕士研究生, 主要从事水生生物遗传育种研究. E-mail:cailei17@163.com 通信作者: 白俊杰, 研究员. Tel: 020-81616129; E-mail: jjbai@163.net
第1期 蔡磊等: 大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种及其杂交子代的遗传分析 71
种基地, 其中北方亚种为1983年引进的养殖种; 佛罗里达亚种为本实验室于2009年从美国原产地引进。2010年3月挑选性腺发育好的1龄大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种亲鱼, 体质量在0.5~0.6 kg之间, 注射LHR-A2和DOM进行人工催产。然后取北方亚种雌与佛罗里达亚种雄各5尾、北方亚种雄6尾与佛罗里达亚种雌5尾进行杂交配组, 于2个水泥池中进行群体自然繁殖。繁殖完毕后, 分别剪取11尾北方亚种(N)亲鱼和10尾佛罗里达亚种(F)亲鱼的部分尾鳍固定于95%的乙醇中。杂交子代在3月龄时, 各取36尾杂交子代的部分尾鳍固定于95%的乙醇中。为简便起见, 将北方亚种♀×佛罗里达亚种♂杂交后代定为正交子代(记为NF), 佛罗里达亚种♀×北方亚种♂定为反交子代(记为FN)。 1.2 亲本及子代基因组DNA的提取
参照北京天根动物基因组DNA抽提试剂盒说明书的方法, 提取样品基因组DNA。并用8 mg/mL(0.8%)的琼脂糖凝胶电泳检测DNA质量, 用紫外分光光度计测定OD260和OD280, 取出部分DNA样品将浓度调至50 ng/μL, 保存于−20℃备用。 1.3 微卫星引物
18对大口黑鲈微卫星引物(表1)中有9对为本实验室通过磁珠富集法[7]获得, 9对来自文献[8]。
所有引物均由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。
1.4 PCR扩增及产物检测
PCR反应总体系为20 µL: 50 ng的基因组DNA, 10×buffer 2 μL, MgCL2(25 mmol/L) 0.8 μL, 4× dNTP (10 μmol/L) 0.3 μL, 上、下游引物(20 pmol/L)各0.5 μL, Taq酶1 U。PCR反应程序为: 94℃预变性4 min; 94℃ 30 s, 退火(退火温度依引物而定)30 s, 72℃ 30 s, 30个循环; 72℃延伸7 min。PCR产物在10%的非变性聚丙烯酰胺凝胶中分离, 银染色。 1.5 数据统计分析
利用Popgene32(Version 1.31)软件统计分析微卫星基因座的等位基因数(Na)、有效等位基因数(Ne)、观测杂合度(Ho)、期望杂合度(He)、χ2检验Hardy-Weinberg平衡、遗传分化指数F-统计量(F-statistics, FST)及Nei’s标准遗传距离(Ds)[9]。根据Botstein等[10]的方法计算每个微卫星位点的多态信息含量(PIC)。应用软件MEGA 4.0采用UPGMA法进行聚类分析, 以分析亲缘关系。
2 结果与分析
2.1 微卫星扩增结果
试验所用18对微卫星引物均能在所有DNA样品中稳定地扩增出相应条带(图1)。各微卫星引物在
表1 18对引物序列及扩增温度
Tab.1 Primer sequences and PCR amplification parameters of microsatellite loci in Micropterus salmoides
位点 locus Jzl31
Jzl48 Jzl60 Jzl68 Jzl72 Jzl83 Jzl84 Jzl85 Jzl131 Lar7 Lma120 Mdo6 Mdo7 Msal21
MiSaTPW76 MiSaTPW117 MiSaTPW165 MiSaTPW184
引物序列( 5–3) primer sequence(5–3)
F:TGGACTGAGGCTACAGCAGA; R: CCAAGAGAGTCCCAAATGGA
F:TCGACGATCAATGGACTGAA; R: TCTGGACAACACAGGTGAGG F:AGTTAACCCGCTTTGTGCTG; R: GAAGGCGAAGAAGGGAGAGT F:AGGCACCGTCTTCTCTTCA; R: CATTGTGGGTGCATTCTCC F:AGGGTTCATGTTCATGGTAG; R: ACACAGTGGCAAATGGAGGT F:TGTGGCAAAGACTGAGTGGA; R: ATTTCTCAACGTGCCAGGTC F:GAAAACAGCCTCGGGTGTAA; R: CACTTGTTGCTGCGTCTGTT F:GGGGCTCACTCACTGTGTTT; R: GTGCGCAGACAGCTAGACAG
F:CAAATGCCCGGTCCACAATAAC; R:GTATTTGAGCCGGATGATAAGTG F: GTGCTAATAAAGGCTACTGTC; R: TGTTCCCTTAATTGTTTTGA F:TGTCCACCCAAACTTAAGCC; R: TAAGCCCATTCCCAATTCTCC F:TGAAATGTACGCCAGAGCAG; R: TGTGTGGGTGTTTATGTGGG F:GTCACTCCCATCATGCTCCT; R: TCAAACGCACCTTCACTGAC F:CACTGTAAATGGCACCTGTGG; R: GTTGTCAAGTCGTAGTCCGC F:ACACAGTGTCAGTTCTGCA; R: GTGAATACCTCAGCAAGCAT
F:TGTGAAAGGCACAACACAGCCTGC; R: ATCGACCTGCAGACCAGCAACACT F:GTTCGCATCTGAATGCATGTGGTG; R: TGAAGGTATTAGCCTCAGCCTACA F:TTGTATACCAAGTGACCTGTGG; R: GGGAGTGCATCTTTCTGAAGTGCC
退火温度/℃ anneal. temp.
60 55 60 58 58 55 55 56 55 47 54 55 53 58 48 55 55 47
72 中国水产科学 第19卷
亲本及杂交子代93个个体中的等位基因数为2~8个, 平均等位基因数为5.0, 平均有效等位基因数为3.55, 扩增片段大小在131~268 bp之间。
大口黑鲈北方亚种亲本、佛罗里达亚种亲本及杂交子代在各位点的等位基因数及有效等位基因数见表2。18个位点在亲代大口黑鲈扩增出87个等位基因, 在杂交子代扩增出81个等位基因。位点Jzl48、Jzl68、Jzl84、MiSaTPW76、Msal21、Mdo6、Mdo7在本实验所用大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种样本间扩增出亚种间特异性条带。其中引物Jzl48在北方亚种中扩增出2种基因型(215 bp/219 bp, 219 bp/219 bp), 在佛罗里达亚种中为单态(203 bp), 在杂交子代中扩增出2种基因型(203 bp/215 bp, 203 bp/219 bp); 引物Mdo7在北方亚种和佛罗里达亚种中均表现为单态, 分别扩增出大小为165 bp和174 bp的条带, 在杂交子代中却扩增出2种基因型 (165 bp/174 bp, 174 bp/182 bp), 其中有1条182 bp 的非亲条带。结果表明, Jzl48和Mdo7可有效鉴别大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其杂交子代。 2.2 遗传多样性分析
18个位点中仅Msal21、MiSaTPW184、Jzl131和Mdo6位点的多态信息含量(PIC)小于0.5, 为中度或者低度多态, 其余位点均为高度多态, 说明所选微卫星引物多态性较好, 可以用于遗传多样性分析(表2)。根据每个位点的等位基因频率, 计算反映群体遗传多样性的有效等位基因数、观测杂合度、期望杂合度以及多态信息含量, 其平均数值范围分别为2.498 1~3.199 7、0.555 6~0.848 8、0.524 8~0.638 9、
0.450 6~0.570 6。平均有效等位基因数、平均期望杂合度、平均多态信息含量均为反交子代(F♀×N♂)最高, 分别为3.199 7、0.638 9、0.570 6, 但平均观测杂合度为正交子代(N♀×F♂)最高, 为0.848 8。这些指标的分析结果表明, 反交子代的遗传多样性最高, 正交子代和佛罗里达亚种次之, 北方亚种遗传多样性最低。
对各组合每个位点进行Handy-Weinberg平衡的χ2检验, 结果表明N中有5个位点偏离平衡, F中有7个位点偏离平衡, 正交子代中除Msal- 21(0.226 7)和M184(0.129 0)位点外, 其余位点均偏离平衡, 反交子代中位点全部偏离平衡(P>0.05)。 2.3 群体间遗传结构分析
通过对大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其正反交子代进行F检验(表3), 结果显示北方亚种与佛罗里达亚种间的遗传分化指数最大(FST =0.240 9), 达到高度分化; 两个杂交组合NF和FN间的遗传分化指数最小(0.067 8), 为中度分化。对亲代与子代间的遗传分化指数对比发现, 正反交子代均与北方亚种的遗传分化指数最小(0.092 0, 0.119 6), 组合间遗传分化差异极显著(P<0.01)。
对正反交子代与其亲本的遗传相似率和遗传距离分别进行分析(表4), 发现正反交子代均与北方亚种的遗传相似率较高。根据亲本与子代间的遗传距离, 采用UPGMA法构建正反交子代与亲本的系统进化树(图2), 由图可知, 正、反交子代首先聚为一支, 然后再与北方亚种聚为一支, 最后与佛罗里达亚种聚合。
图1 引物Lar7在北方亚种、佛罗里达亚种及部分杂交子代个体中的扩增结果
111: 北方亚种; 1221: 佛罗里达亚种; 2233: 反交子代(F♀×N♂); 3345: 正交子代(N♀×F♂); M: marker.
Fig.1 Electrophoresis results of primer Lar7 in part individuals of four Micropterus salmoides groups
111: M.s.salmoides; 12-21: M.s. floridanus; 2233: M.s.floridanus♀×M.s.salmoides♂; 3345:M.s.salmoides♀×
M.s.floridanus♂; M: marker.
第1期 蔡磊等: 大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种及其杂交子代的遗传分析 73
表2 大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其杂交子代在18个微卫星位点的等位基因数(Na)、有效等位基因数(Ne)及多态信
息含量(PIC)
Tab.2 Number of alleles (Na), number of effective alleles (Ne) and polymorphism information content(PIC) at 18 microsatel-lite loci assessed for the four Micropterus salmoides groups
位点 locus Jzl31 Jzl48 Jzl60 Jzl68 Jzl72 Jzl83 Jzl84 Jzl85 Jzl131 Lar7 Lma120 Mdo6 Mdo7 Msal21
MiSaTPW76 MiSaTPW117 MiSaTPW165 MiSaTPW184 平均mean
正交子代 反交子代 M.s.salmoides♀× M.s.floridanus♀× M.s.floridanus♂ M.s.salmoides♂
Ne PIC Na Ne PIC Na Ne PIC Na Ne PIC Na
3 2.14160.4315 2 2.00000.37504 3.34020.57 2 2.00000.37502 1.760.3397 1 1.00000.00003 2.65570.5525 3 2.33300.48506 4.65380.7534 6 5.55560.79475 4.06270.7115 6 5.06250.77503 2.54740.5244 3 2.46910.52794 3.250.6377 5 4.08190.71525 4.17240.7236 5 4.16670.72246 4.30560.7323 5 4.50000.74255 4.10170.7184 6 5.12820.77574 3.22790.6360 5 3.99380.70434 3.22670.08 3 2.40960.54344 3.28520.06 5 3.86290.69702 1.19800.1516 3 1.94170.40634 2.62880.5458 3 2.65570.55252 1.98360.3729 1 1.00000.00003 2.50190.5204 1 1.00000.00004 3.27030.6368 7 6.06060.81326 4.40820.7435 6 5.21530.78093 2.65930.5532 2 1.72410.33183 2.32260.4767 4 3.03870.61003 1.32240.2284 2 1.34230.22242 2.00000.3750 2 2.00000.37501 1.00000.0000 1 1.00000.00003 237150.43 2 2.00000.37501 1.00000.0000 3 2.53160.52693 1.71090.3688 3 2.48040.52743 2.54740.5244 5 3.84620.69654 2.90260.5957 6 4.06910.72224 3.40850.6555 5 3.12500.203 1.98170.3972 5 3.30190.534 2.98770.6041 4 2.43900.50394 3.250.6377 4 3.84570.69172 1.42350.2532 3 2.38100.49182 1.49220.2754 3 2.27170.4971
北方亚种
M.s.salmoides
佛罗里达亚种 M. s. floridanus
3.1667 2.4981
0.4506 3.4444
2.7845
0.4652
3.7222
2.8737
0.5545 3.88 3.1997
0.5706
表3 大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其子代的F-统计量(FST)
Tab .3 Pairwise F-statistics estimates among Micropterus salmoides salmoides, M.salmoides floridanus and their hybrids
北方亚种 M.s.salmoides 佛罗里达亚种 M. s. floridanus 正交子代
M.s.salmoides♀×M. s. floridanus♂ 反交子代
M.s.floridanus♀×M. s. salmoides♂
北方亚种 M.s.salmoides
佛罗里达亚种 M. s. floridanus
正交子代
M.s.salmoides♀×M.s.floridanus♂
**** **** ****
反交子代
M.s.floridanus♀×M.s.salmoides♂
**** **** ****
**** **** 0.2409 **** 0.1026 0.1318
0.0920 0.0932 0.0680 ****
表4 大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其正反交子代的遗传相似率和遗传距离
Tab.4 Genetic similarity and genetic distance of M.salmoides salmoides, M.salmoides floridanus and their hybrids
北方亚种 M.s.salmoides 佛罗里达亚种 M. s. floridanus 正交子代
M.s.salmoides♀×M. s. floridanus♂ 反交子代
M.s.floridanus♀×M. s. salmoides♂
北方亚种 M.s.salmoides
佛罗里达亚种 M.s.floridanus
正交子代
M.s.salmoides♀×M.s.floridanus♂
0.7488 0.7479 ****
反交子代
M.s.floridanus♀×M.s.salmoides♂
0.6283 0.7285 0.7570
**** 0.3467 1.0594 **** 0.23 0.2904
0.47 0.3168 0.2784 ****
注:对角线以上的数字表示群体间的相似性指数, 对角线以下的数字表示群体间的相对遗传距离. Note: The dates above diagonal mean genetic similarity and below mean genetic distance.
74 中国水产科学 第19卷
图2 大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其杂交子代的UPGMA聚类分析图
Fig.2 UPGMA molecular tree based on genetic distance of M. salmoides salmoides, M. salmoides floridanus and their hybrids
3 讨论
3.1 非孟德尔遗传位点的出现
微卫星标记是符合孟德尔分离定律的共显性遗传标记, 理论上微卫星扩增产物在亲代与子代之间应以孟德尔方式传递, 表现为子代的条带均来自亲代。本实验在读取大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其正反交子代的微卫星标记谱带时发现, 引物Mdo7在7个正交子代个体中扩增出1条大小为182 bp的非亲条带, 分析其可能源自于杂交细胞过程中染色体的结构重排、断裂以及丢失[11]。这种非亲位点在鱼类杂交实验中也有报道
[12−13]
, 但出现的比例通常较低。
3.2 杂交子代与亲本间遗传关系的偏向
本研究中正反交子代在遗传相似性和遗传距离上, 均表现出杂交子代与大口黑鲈北方亚种的亲缘关系相近。杂交子代与两亲本的遗传距离不对等的现象在其他鱼类的杂交实验中也常有出现, 如虹鳟(Oncorhynchus mykiss)♀×山女鳟(Onc- orhynchusmasou masou)♂的杂交子代在遗传上偏向父本山女鳟[14], 大黄鱼(Pseudosiaena cro-cea)♀×黄姑鱼(Nibea albiflora)♂的杂交子代与母本大黄鱼亲缘关系较近[15]。荷包红鲤(Cyprinus carpiovar wuyuanensi)与德国镜鲤(Cyprinus car-pio mirror)正反交子代均与荷包红鲤的亲缘关系较近[16]。遗传物质对子代的贡献不对等的现象, 推测是由于两亲本基因的纯合度不同, 导致基因纯度较高亲本的基因型在后代中被检测到的几率增加造成的。本研究中检测到北方亚种基因的纯合度要比佛罗里达亚种高, 这样北方亚种的基因型在后代中被检测到的几率也相应要比佛罗里达亚种高。但也有学者认为杂交遗传过程中的重组和突变、着丝粒和异染色质附近区域微卫星标记
的偏分离聚集[17], 以及发育过程中染色体的选择性丢失[18]等原因也会导致这种双亲遗传给子代的比例失衡。
3.3 大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种杂交机制
目前鱼类杂交已涉及3个目、7个科, 共40多种鱼类[19], 由于亲本遗传背景的差异, 杂交遗传的方式也不尽相同, 如双亲精卵未发生结合的雌核、雄核发育[20], 双亲部分遗传物质发生合并或交换[19]以及真正的精卵结合[21]。本研究在对18对微卫星标记谱带研究时发现, 杂交子代的等位基因除1条非亲条带外, 全部来自父母本, 符合孟德尔遗传机制, 表明大口黑鲈亚种间杂交后代是精卵结合发育的产物, 这一结论与杂交子代的表型是介于两亲本之间的结果相吻合。Wheat等[22]在进行同属的大口黑鲈与小口黑鲈(Micropterus dolomieui)的种间杂交试验时, 也获得了精卵结合的杂交子代, 产生精卵结合的结果与两个亲本物种的亲缘关系较近有关。 3.4 杂种优势预测
杂交能够产生杂种优势的原因之一在于杂交过程增加了基因的杂合性, 改变了不同位点上的基因互作[23]。王爱民等[24]对马氏珠母贝(Pinctada martensii)三亚野生群体♀与印度养殖群体♂的杂交试验证明, 杂交子代的杂种优势与其杂合度和遗传多样性的增加直接相关。Shikano等[25]对模式动物青鳉(Poecilia reticulata)不同品系间杂交后代抗盐能力与平均杂合度之间的关系进行研究发现, 其耐盐能力与平均杂合度存在显著的正相关 (r2=0.650)。本研究在对大口黑鲈北方亚种、佛罗里达亚种及其杂交子代的遗传结构进行分析时发现, 杂交子代的平均有效等位基因数(Ne)和杂合度(Ho, He)均明显高于两亲本, 基因杂合性有所增加, 杂种优势显性学说认为, 当基因型和环
第1期 蔡磊等: 大口黑鲈北方亚种和佛罗里达亚种及其杂交子代的遗传分析 75
境之间达到一种相互协调的平衡时, 基因的杂合性能提高机体的生活力、繁殖力和生长速度等, 推测大口黑鲈亚种间杂种子代可能具有杂种优势。在水产动物中亚种间杂交的后代显示出杂种优势的现象也很常见, 如分别属于两个亚种的邹纹盘鲍(Haliotis discus hannai Ino)和日本盘鲍(Haliotis discus discus Ino)的杂交子代在生长率和成活率方面均具有较强的杂种优势[26]。黑莓鲈(Pomoxis nigromaculatus)和白莓鲈(P. annularis)的亚种间杂交后代的生长速率明显高于两亲本[27]。对正反交子代的遗传多样性指标分析发现, 反交子代无论在有效等位基因数、杂合度还是多态信息含量上均比正交子代高, 预测反交组合更具有育种潜力。 参考文献:
[1] Bailey R M, Hubbs C L. The black basses (Micropterus) of
Florida, with description of a new species [J]. Univ Mich Mus Zool Occasion Papers, 1949, 516: 1–40.
[2] Maceina M J, Murphy B R. Stocking Florida largemouth
bass outside its native range [J]. Trans Am Fish Soc, 1992, 121: 686–691.
[3] Bai J J, Lutz-Carrillo D J, Quan Y, et al. Taxonomic status
and genetic diversity of cultured largemouth bass Microp-terus salmoides in China[J]. Aquaculture, 2008, 278(1−4): 27–30. [4] 樊佳佳, 白俊杰, 叶星, 等. 中国养殖大口黑鲈的亚种分类地位探讨[J]. 大连水产学院学报, 2009, 24(1): 83–86. [5]
Williamson J H, Carmichael G J. An aquacultural evaluation of Florida, northern, and hybrid largemouth bass, Microp-terus salmoides [J]. Aquaculture, 1990, 85(1−4): 247–257. [6] Kleinsasser L J, Willamson J H, Whiteside B G. Growth and
catchability of northern, Florida, and F1 hybrid largemouth bass in Texas ponds[J]. N Am J Fish Manag, 1990, 10: 462–468. [7]
梁素娴, 孙效文, 白俊杰,等 .微卫星标记对中国引进加州鲈养殖群体遗传多样性的分析[J]. 水生生物学报, 2008, 32(5): 80–86.
[8] Carrillo D J L, Nice C C, Bonner T H, et al. Admixture
analysis of Florida largemouth bass and northern largemouth bass using microsatellite Loci[J]. Trans Am Fish Soc, 2006, 135: 779–791.
[9] Nei M. Estimation of average heterozygosity and genetic
distance from a small number of individuals[J]. Genetics, 1978, : 583–590.
[10] Botstein D, White R L, Skolnick M, et al. Construction of a
genetic linkage map in man using restriction fragment length
polymorphisms [J]. Am J Human Genet, 1980, 32: 314–331. [11] Faure S, Noyer J L, Horry J P A. A molecular marker-based
linkage map of diploid bananas(Mum accuminata)[J]. Theo-ret Appl Genet, 1993, 87: 517–526.
[12] 李莉好, 喻达辉, 黄桂菊, 等. 尼罗罗非鱼、奥利亚罗非鱼
及其正、杂交群体的遗传多样性[J]. 中国水产科学, 2008, 15(4): 585–592.
[13] 傅建军, 王荣泉, 刘峰, 等. 草鱼长江和珠江群体及长江
♀×珠江♂杂交组合遗传差异的微卫星分析[J]. 上海海洋大学学报, 2010, 19(4): 433–439.
[14] 张玉勇, 白庆利, 贾智英, 等. 虹鳟、山女鳟及其杂交子代
(虹鳟♀×山女鳟♂)的微卫星分析[J]. 水产学报, 2009, 33(2): 188–195.
[15] 刘颖, 蔡明夷, 刘贤德, 等. 大黄鱼♀与黄姑鱼♂杂交F1家
系初孵仔鱼的AFLP分析[J]. 水产学报, 2010, 31(6): 672–678.
[16] 池喜峰, 贾智英, 李池陶, 等. 荷包红鲤与德国镜鲤正反
杂交组遗传结构的微卫星分析[J]. 大连海洋大学学报, 2010, 25(5): 450–455.
[17] 张玉山, 陈庆全, 吴薇, 等.水稻SSR标记遗传连锁图谱
着丝粒的整合及其偏分离分析[J]. 华中农业大学学报, 2008, 7(2): 167–171.
[18] Estoup A, Jarne P, Cornuet J. Homoplasy and mutation model at
microsatellite loci and their consequences for population genet-ics analysis[J]. Mol Ecol, 2002, 1(9): 1591–1604.
[19] 楼允东, 李小勤. 中国鱼类远缘杂交研究及其在水产养殖
上的应用[J]. 中国水产科学, 2006,13(1): 151–158. [20] 王晓清, 王志勇, 谢中国, 等. 大黄鱼(♀)与鮸鱼(♂)杂交
的遗传分析[J]. 水产学报, 2008, 32(1): 51–57.
[21] 宓国强, 赵金良, 贾永义, 等. 鳜(♀)×斑鳜(♂)杂种F1的
形态特征与微卫星分析[J]. 上海海洋大学学报, 2010, 19(2): 145–150.
[22] Wheat T E, Childers W F, Whitt G S. Biochemical genetics of
hybrid sunfish: differential survival of heterozygotes[J]. Bio-chem Genet, 1974,11(3): 205–219.
[23] Lippman Z B, Zamir D. Heterosis: revisiting the magic[J].
Trends Genet, 2007, 23(2): 60–66.
[24] 王爱民, 王嫣, 顾志峰, 等. 马氏珠母贝(Pinctada marten-sii)2个地理群体杂交子代的杂种优势和遗传变异[J]. 海洋与湖沼, 2010, 41(1): 140–147.
[25] Shikano T, Taniguchi N. Relationships between genetic
variation measured by microsatellite DNA markers and a fitness-related trait in the guppyPoecilia reticulata)[J]. Aqu- aculture, 2002, 209: 77–90.
[26] 万俊芬. 鲍与扇贝遗传育种中的分子标记研究[D]. 青岛:
中国海洋大学, 2003.
[27] Travnichek V H, Maceina M J, Dunham R A. Hatching time and
early growth of age-0 black crappies, white crappies, and their naturally produced F1 hybrids in Weiss Lake, Alabama[J]. Trans Am Fish Soc, 1996, 125(2): 334–337.
76 中国水产科学 第19卷
Genetic analysis of northern largemouth bass, Florida largemouth bass, and their reciprocal hybrids
CAI Lei 1 2, BAI Junjie 1 2, LI Shengjie 1, CHEN Kunci 1, FAN Jiajia 1 , MA Dongmei 1
1. Key Laboratory of Tropical Subtropical Fishery Resource Application Cultivation, Ministry of Agriculture; Pearl River Fisheries Research Institute of Chinese Academy of Fishery Sciences, Guangzhou 510380, China; 2. College of Fisheries and Life Science, Shanghai Ocean University, Shanghai 201306, China
Abstract: We evaluated the genetic variation and genetic structure of northern largemouth bass, Micropterus sal-moides salmoides (N), Florida largemouth bass, M.S. floridanus (F), and their obverse (N♀×F♂) and inverse (F♀×N♂) crosses, using 18 pairs of microsatellite primers. We generated between 2–8 alleles at each locus, with a mean allele number of 5.0. Six subspecies specific loci (Jzl48, Jzl68, Jzl84, MiSaTPW76, Msal21, Mdo6 and Mdo7) could be used to identify the two subspecies. Moreover, 2 loci (Jzl48, Mdo7) could be used to distinguish parents and their reciprocal hybrids. The number of effect alleles (Ne), expected heterozygosity (He), and polymorphic information content were all highest in F♀×N♂ (3.199 7, 0.638 9, 0.570 6, respectively). The observed heterozy-gosity (Ho) was highest in N♀×F♂ (0.848 8). FST analysis of all groups and loci revealed that both reciprocal hy-brids had lower genetic differentiation with N species. The UPGMA clustering analysis suggested that the off-spring was nearest to the female brood stock for the obverse cross and nearest to the male brood stock for the in-verse cross, suggesting that northern largemouth bass pass more genetic material than Florida largemouth bass. Key words: northern largemouth bass; Florida largemouth bass; hybridization; microsatellite mark; hereditary relationship
Corresponding author: BAI Junjie. Tel: +86-20-81616129; E-mail: jjbai@163.net
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